Livestock Research for Rural Development 32 (1) 2020 LRRD Search LRRD Misssion Guide for preparation of papers LRRD Newsletter

Citation of this paper

Effets de la chaleur sur des constantes biologiques et sur le rendement en carcasse du poulet de chair élevé dans le Nord Algérien

A K Mouss1,2, D Hammouche1,2 et H Ikhlef1

1 École Nationale Supérieure Agronomique, Département des productions animales, Hassan Badi 16 200, Alger, Algérie
2 Faculté des Sciences de la Nature et de la Vie et des Sciences de la Terre, Université Djilali Bounaama, 44000 Khemis Miliana - Ain Defla, Algérie
a.mouss@univ-dbkm.dz

Résumé

Cet essai rapporte l’évolution de 4 paramètres sanguins (glycémie, hémoglobinémie, cholestérolémie et triglycéridémie) à différents âges (J8, J18, J28, J38 et J50) chez 200 poulets de chair élevés dans le Nord Algérien en saison estivale. Les rendements en carcasse éviscérée et en principaux muscles (Pectoralis major, Sartorius et Gastrocnemius) ont également été mesurés chez 4 femelles et 4 mâles à l’âge d’abattage (50 jours). La température était souvent supérieure à 30°C et l’humidité relative souvent inférieure à 70%.

Les résultats révèlent une perturbation du profil sanguin surtout en phase de finition. Une augmentation de la glycémie, de la cholestérolémie et de la triglycéridémie a été observée. Ces valeurs ont atteint respectivement au 50e jour 2,53±0,15 ; 1,22±0,02 et 1,17±0,05 g/l au lieu de taux normaux respectifs de 2,27-3,00 ; 0,52-1,52 et 0,50-2,50 g/l.

Une dépréciation de la qualité de la carcasse a également été constatée comparativement aux valeurs normatives du guide d’élevage de la souche. Elle s’est traduite par des rendements moyens de 66,4±1,7 (norme 71,6-72,1%) ; 16,1±1,4 (norme 22,6-22,9%) et 21,1±1,8% (norme 21,1-21,9%) respectivement pour la carcasse éviscérée, les muscles pectoraux et ceux de la cuisse. Enfin, la proportion de gras abdominal a été en moyenne de 2,6±0,4% ce qui dépasse la norme requise (autour de 2%).

Mots clé: été, paramètre sanguin, poulet de chair, rendement en carcasse, stress thermique


Effects of heat on biological constants and carcass yield of broilers in northern Algeria

Abstract

This study reports the evolution of four blood parameters (blood glucose, hemoglobin, cholesterol and triglyceride levels) at different ages (D8, D18, D28, D38 and D50) of broiler chickens reared in northern Algeria during the summer season. Moreover, we measured the yield of both eviscerated carcass and that of the main muscles in 4 females and 4 males at slaughtering age (50 days). The temperature was often above 30 °C and the relative humidity often below 70%.

The results show off a disturbance in the blood profile, especially during the finishing phase. We notice an increase of blood glucose, cholesterol and triglyceride levels; these values reached respectively 2.53±0.15; 1.22±0.02 and 1.17±0.05 g/l instead of the respective normal rates of 2.27-3.00; 0.52-1.52 and 0.50-2.50 g/l.

The carcass quality is scoring lower the levels compared to that standard of the broiler management guide; which hence led to average yields of 66.4±1.7 (standard 71.6-72.1%); 16.1±1.4 (standard 22.6-22.9%) and 21.1±1.8% (standard 21.1-21.9%) respectively for the eviscerated carcass, the pectoral muscles and those of the thigh. As for abdominal fat, its proportion reached 2.6±0.4% as average, which exceeds the required standards (around 2%).

Keywords: blood parameter, broiler, carcass yield, heat stress, summer


Introduction

Au niveau mondial ainsi qu’en Algérie, les filières avicoles ne cessent de se développer. Une attention particulière est portée à la viande de poulet de chair. Celle-ci reste abordable par rapport aux viandes rouges et demeure le principal moteur de progression de la production totale de viande au niveau mondial (Ocde/Fao 2017).

Dans le même ordre d’idées, Malpel et al (2014) ajoutent que la consommation de volailles, surtout celle du poulet, est en constante augmentation. Ils expliquent cela par des faibles coûts de production et des prix à la vente abordables, ce qui contribue à en faire une viande de choix dans les pays en voie de développement. C’est pourquoi, la production des viandes blanches en Algérie a connu une augmentation permanente. Elle a enregistré un taux d’accroissement de 109% durant la période 2010-2017 comparativement à la décennie 2000-2009 (MADR 2019). Il en est de même pour la consommation qui est passée de 0,82 kg/habitant/an en 1972 à 9,18 kg en 1986 (Fenardji 1990) puis autour de 11 kg actuellement (Kaci et Kheffache 2016) ce qui a permis, relativement, de réduire le déficit protéique dans le modèle alimentaire algérien.

En revanche, il est utile de signaler que l’élevage de poulet de chair en Algérie se pratique généralement dans des bâtiments vétustes, faiblement isolés avec des investissements quasi inexistants en matière de contrôle de l’ambiance. Ceci impacte fortement l’activité, surtout en période estivale. Ajoutez à cela, la grande sensibilité de l’espèce aux hautes températures. Cet ensemble mène à l’enregistrement de piètres performances et à une dégradation de la qualité de la carcasse, ce qui pourrait engendrer des périodes de crises sur le marché, et de là, générer des tensions sur la filière et compromettre la régularité de l’offre.

L’objectif de notre étude a été de mettre en relief la cinétique de certains paramètres biologiques (glycémie, hémoglobinémie, cholestérolémie et triglycéridémie) ainsi que les rendements en carcasse et en principaux muscles au cours d’un élevage de poulet de chair mené dans le Nord Algérien en période estivale. La variation de ces constantes pourrait constituer un indicateur de suivi de l’état de stress au niveau des élevages de poulet de chair.

Matériel et méthodes

Matériel animal

L’essai expérimental a consisté à mener un élevage de 200 poulets de chair de souche Arbor Acres réceptionné à l’âge d’un jour et non sexé. L’expérimentation s’est déroulée pendant la période juillet – août au niveau de la commune de Baraki située dans le Nord Algérien.

Méthodes de mesure des paramètres d’ambiance

La température et l’hygrométrie relative ont été mesurées à l’aide de thermohygromètres électroniques placés à différents endroits du local, au milieu et latéralement. La lecture a été effectuée après une période de stabilisation de 10 minutes. Les relevés ont été effectués toute les deux heures (de 8h à 20h) afin d’obtenir des valeurs représentatives moyennes des dits paramètres.

Méthodes de mesure des paramètres sanguins

Les paramètres sanguins mesurés ont été la glycémie, l’hémoglobinémie, la cholestérolémie et la triglycéridémie. Le sang prélevé était mis dans des tubes préalablement identifiés de type EDTA pour la détermination de l’hémoglobinémie et héparinés pour la glycémie, la cholestérolémie et la triglycéridémie. Les prélèvements ont été effectués au 8ème, 18ème, 28ème, 38èmeet 50ème jour d’âge.

Le sang collecté a été centrifugé pendant 15 minutes à une vitesse de 3000 tours/minutes. Une micropipette avec des embouts à usage unique a été utilisée afin de récupérer le plasma (surnageant). Celui-ci a été placé dans des tubes de type eppendorf qui résistent à la congélation. Ils ont été placés dans un congélateur jusqu’au jour des analyses.

Le taux d’hémoglobine dans le plasma sanguin a été réalisé par comptage des globules rouges à l’aide d’un automate de type ADIVA 560. La glycémie, la cholestérolémie et la triglycéridémie ont été effectués par une technique colorimétrique réalisée à l’aide d’un spectrophotomètre de marque « Biotecnica instrument / BT 3000 ».

Méthodes de mesure du rendement en carcasse

Afin d’effectuer ces mesures, 8 poulets dont 4 pour chaque sexe, mâle et femelle ont été prélevés à l’âge de 50 jours sur la base d’un poids vif moyen représentatif.

Après sacrifice et plumaison, les organes internes et le tube digestif ont été retirés. Les carcasses ont été ressuyées pendant 24 h à une température de + 4°C. La carcasse éviscérée ou PAC « prête à cuire » a été obtenue après retrait du cou et du gras abdominal.

Les deux muscles pectoraux (Pectoralis major) ont été prélevés de la cage thoracique à l’aide d’un couteau édenté. Il en est de même pour ceux des cuisses (Sartorius) et des pilons (Gastrocnemius).

Le rendement représente le poids relatif (%) de ces paramètres par rapport au poids vif des poulets.

Traitement des données

Le calcul des différentes moyennes et écarts-types a été réalisé avec le programme Excel (version 2007).

Résultats et discussion

Evolution des paramètres d’ambiance

Les températures ambiantes relevées au cours de cette essai ont été de l’ordre de 33,9±3,0 ; 32,0±2,5 et 32,1±2,5°C respectivement pour les phases de démarrage, de croissance et de finition. Pour ce qui est de l’hygrométrie relative, elle a été de 52,9±8,9 ; 66,7±10,3 et 63,8±12,0% pour les trois phases d’élevage. Ces résultats dépassent largement les valeurs normatives vu que Cuérin et al (2011) recommandent que la température de réception doit être en moyenne de 33°C au démarrage. Ensuite, elle devrait baisser de 2 à 3°C chaque trois jours, pour se situer autour de 18 à 20°C à partir du 35ème jour d’âge jusqu’en période de finition. Cette haute température constatée témoigne d’une situation de stress thermique qui s’est répercutée sur le taux d’humidité dans le bâtiment. En effet, ce paramètre devrait se situer autour de 70% selon les recommandations du guide de la souche Arbor Acres plus (2014). Ce phénomène témoigne d’un assèchement de l’atmosphère qui pourrait être vecteur de troubles respiratoires.

Evolution des paramètres sanguins durant l’élevage

Le tableau 1 rapporte l’évolution des paramètres sanguins (glycémie, hémoglobinémie, cholestérolémie et triglycéridémie) aux différents jours de prélèvement.

Tableau 1. Evolution des paramètres plasmatiques durant l’élevage
Jours d’élevage Composants plasmatiques (moyenne±écart-type)
Gly (g/l) Hgb (g/dl) Chol (g/l) Trig (g/l)
J 8 1,94±0,41 7,6±1,0 1,47±0,03 1,39±0,09
J 18 1,70±0,21 11,0±1,6 1,01±0,06 0,73±0,06
J 28 1,77±0,15 10,1±0,9 1,16±0,16 0,84±0,04
J 38 2,43±0,18 8,7±0,5 1,19±0,04 0,92±0,04
J50 2,53±0,15 8,4±0,0 1,22±0,02 1,17±0,05
Norme moyenne habituelle 2,27-3,00 10,25-15,10 0,52-1,52 0,50-2,50
J: Jours d’élevage; Gly: glycémie; Hgb: Hémoglobinémie; Chol: Cholestérolémie; Trig: Triglycéridémie

Les résultats issus de l’analyse des échantillons de plasma révèlent des fluctuations de la glycémie. En effet, celle-ci a été en moyenne de 1,94 g/l à J8 ; elle s’est située autour de 1,70 à J18 et J28. En fin de phase de croissance et de finition, une grande augmentation de la glycémie a été observée ; elle a été en moyenne de 2,43 et 2,53 g/l respectivement pour les 38ème et 50ème jours d’âge. Cette dépression de la glycémie puis son augmentation en fin d’élevage ont également été rapportées par Veđerek et al (2002) à l’issue de leurs travaux sur des poulets de chair menés sous contraintes thermiques. Cette cinétique de développement de la glycémie serait due à une probable diminution de son absorption par les muscles squelettiques, entrainant ainsi, une plus grande offre de glucose aux cellules hépatiques, ce qui engendrerait une augmentation de la lipogenèse hépatique suivie d’un dépôt accru de lipides, surtout sous-cutanés en phase de finition comme l’ont conclu Blahova et al (2007). En revanche, il est utile de signaler que Buyse et al (2001) n’ont observé aucun effet sur la glycémie chez des poulets élevés sous des températures comprises entre 20 et 28°C quels que soient l’âge et le sexe des poulets.

L’hémoglobinémie pour sa part a subi une évolution inverse par rapport à la glycémie; elle a été en moyenne de 7,64 ; 10,95 ; 10,09 ; 8,70 et 8,35 g/dl respectivement pour les âges de prélèvement. Ces résultats confortent ceux de Veđerek et al (2002) qui ont rapporté une diminution systématique de la teneur de ce composé à partir du 21ème jour d’âge chez des poulets soumis à de hautes températures. Il en est de même pour Mujahid et al (2009) qui ont constaté qu’après une brève exposition à la chaleur, l’hémoglobinémie avait tendance à diminuer.

Quant à la cholestérolémie, une diminution a été constatée entre le 8ème et le 18ème jours passant ainsi de 1,47 à 1,01 g/l. Cette diminution serait probablement liée à la chaleur comme rapporté par Veđerek et al (2002) qui ont signalé une diminution systématique de la cholestérolémie, à partir de la 3ème semaine d’âge chez des poulets de chair élevés sous contraintes thermiques. En phases de croissance et de finition (J28, J38 et J50), la cholestérolémie a eu tendance à augmenter passant ainsi de 1,16 à 1,19 et 1,22g/l respectivement. Ceci va dans le même sens que les travaux de Shim et al (2006) qui ont constaté une augmentation de ce paramètre chez des poulets menés sous une température moyenne de 34°C. Les mêmes auteurs ont ajouté que cet effet a aussi été observé à la thermoneutralité (22°C) et ils ont lié ce résultat à l’âge des animaux.

Pour la triglycéridémie, elle a été en moyenne de 1,39g/l à J8. En phase de croissance, elle s’est située à 0,73 et 0,84 g/l en moyenne à J18 et J28. En revanche, en fin de croissance et en finition, la triglycéridémie a eu tendance à augmenter. Elle a affiché 0,92 et 1,17 g/l respectivement pour les prélèvements de J38 et J50. Cette évolution de ce paramètre a été interprétée par plusieurs auteurs dont Szabo et al (2005) et qui ont attribué les valeurs élevées de triglycérides en début de croissance à leur synthèse active dans le foie et leur faible mobilisation et utilisation par les tissus. En revanche, Geraert et al (1996) ont expliqué qu’en phase de finition, l’absorption des lipides sanguins par les tissus adipeux périphériques serait intense, d’où l’augmentation des triglycérides et un dépôt de gras sous cutanés accrus pendant cette phase.

Rendement en carcasse à l’âge d’abattage

Le Tableau 2 présente le rendement en carcasse ainsi que celui en principaux muscles enregistrés au 50ème jour d’âge.

Tableau 2. Rendement en carcasse des poulets à J50
PAC Rendement en carcasse (moyenne±écart-type)(%)
Muscles
Pectoralis major
Muscles Sartorius
et Gastrocnemius
Gras
abdominal
Rendement 66,4±1,7 16,1±1,4 21,1±1,8 2,6±0,4
Normes 71,6-72,1 22,6 – 22,9 21,1 – 21,9 2,0
PAC: Carcasse éviscérée, dont le cou, la graisse abdominale et les organes internes ont été retirés;
Muscles Pectoralis major: muscles pectoraux sans la peau et sans les os;
Muscles Sartorius et Gastrocnemius: haut de cuisse et pilon entiers (avec la peau et les os)

Le rendement en carcasse éviscérée (PAC) s’est établi en moyenne à 66,4±1,7%. Il a été impacté puisque selon le guide de la souche Arbor Acres plus (2014), le rendement normal se situe entre 71,6 et 72,1% pour des poulets pesant en moyenne 2 kg, ce qui est le cas pour notre essai.

Le rendement en muscles pectoraux (Pectoralis major) a été en moyenne de 16,1±1,4% alors que celui des cuisses et pilons (Sartorius et Gastrocnemius) a été de 21,1±1,8% ; selon le même guide d’élevage, ces rendements devraient se situer respectivement dans une plage de 22,6 à 22,9 et de 21,1 à 21,9%.

Le taux de gras abdominal a été en moyenne de 2,61±0,40% pour sa part. Il demeure élevé par rapport au guide d’élevage de la souche et qui rapporte une proportion qui se situe autour de 2%.

Plusieurs auteurs, dont Sands et Smith (1999) et Ahmed et al (2006) ont rapporté que sous contrainte thermique, le dépôt de gras devient accru sur l’ensemble de la carcasse, et ce, aux niveaux abdominal, intramusculaire et sous-cutané. Cette situation mènerait selon les mêmes auteurs à une dépréciation du rendement en carcasse, notamment en principaux muscles ainsi qu’une augmentation de la proportion de gras. Enfin, les données antérieures de Leclercq (1984) ont monté que la détermination de la taille et le nombre d’adipocytes se faisaient par hypertrophie pour le gras abdominal et par hyperplasie pour le gras sous-cutané dans des conditions de stress thermique chronique.

Conclusion

Cet essai s’est déroulé dans des conditions de stress thermique pour les trois phases d’élevage (de démarrage, de croissance et de finition) ce qui a abouti à une perturbation du profil plasmatique pour l’ensemble des paramètres sanguins mesurés, à savoir, la glycémie, l’hémoglobinémie, la cholestérolémie et la triglycéridémie.

Cette situation a également impacté fortement le rendement en carcasse puisque une diminution du rendement en principaux muscles (Pectoralis major, Sartorius et Gastrocnemius) a été constatée. Le dépôt de gras, quant à lui, a été plus élevé ce qui détériore la qualité de la carcasse.

Nos résultats montrent l’utilité de surveiller le profil sanguin des poulets de chair qui constituerait un baromètre de mesure de stress afin de pouvoir prendre les mesures nécessaires en élevage de poulet de chair.

Références bibliographiques

Ahmed T, Mushtaq T, Mahr U N, Sarwar M, Hooge D M et Mirza M A 2006 Effect of different non chloride sodium sources on the performance of heat stressed broiler chickens. British Poultry Science. 47 (3): 249-256.

Arbor acres plus 2014 Objectifs de performances des poulets de chair. http://tmea.aviagen.com/assets/Tech_Center/BB_Foreign_Language_Docs/French_TechDocs/AA-Broiler-PO-2014-FR.pdf

Blahová J, Dobšíková R, Straková EetSuchý P 2007 Effect of low environmental temperature on performance and blood system in broiler chickens (Gallus domesticus). Acta Vet. Brno 2007, 76: 17-23. https://actavet.vfu.cz/media/pdf/avb_2007076S8S017.pdf Buyse JJanssens GP et Decuypere E 2001 The effects of dietary L-carnitine supplementation on the performance, organ weights and circulating hormone and metabolite concentrations of broiler chickens reared under a normal or low temperature schedule. British Poultry Science 42: 230-241.

Cuérin J L, Balloy D et Villate D 2011 Maladies des volailles. Éditions France Agricole. 591 p.

Fenardji F 1990 Organisation, performance et avenir de la production avicole en Algérie. In Sauveur B. (ed.). L’aviculture en Méditerranée. Montpellier : CIHEAM, options Méditerranéennes : Série A séminaires Méditerranéens. 7 : 253-261. http://ressources.ciheam.org/om/pdf/a07/CI901600.pdf

Geraert PA, Padilha JCF et Guillaumin S 1996 Metabolic and endocrine changes induced by chronic heat exposure in broiler chickens: biological and endocrinological variables. British Journal of Nutrition 75 (2),  205-216. https://pdfs.semanticscholar.org/d4fd/c9ff90416ce1d0c032f181066598aa8a5fa2.pdf

Kaci A et Kheffache H 2016 La production et la mise en marché du poulet de chair dans la wilaya de Médéa (Algérie) : nécessité d’une coordination entre acteurs. Cahiers du CREAD n. 118, p. 113-132.https://www.iamm.ciheam.org/ress_doc/opac_css/doc_num.php?explnum_id=15820

Leclercq B 1984 Adipose tissue metabolism and its control in birds. Poultry Science. 63: 2044-2054.

MADR 2019 Ministère de l’Agriculture, du Développement Rural et de la pêche. Statistiques agricoles. http://madrp.gov.dz/agriculture/statistiques-agricoles/

Malpel G P, Marigeaud M et Marty S 2014 La filière volaille de chair. Rapport CGAAER, 55 p.

Mujahid A, Akiba Y et Toyomisu M 2009 Progressive changes in the physiological responses of heat-stressed broiler chickens. J. Poult. Sci., 46: 163-167. https://pdfs.semanticscholar.org/9930/69e5335e962eb1c2499d4c8d6f44065d86f2.pdf

Ocde et Fao (Organisation de coopération et de développement économiques /Organisation des Nations Unies pour l’Alimentation et  l’Agriculture/ Food and Agriculture Organisation) 2017 Perspectives agricoles de l’OCDE et de la FAO 2017-2026. Éditions OCDE, Paris. http://www.fao.org/3/a-i7465f.pdf

Sands JS et Smith MO 1999 Broilers in heat stress condition effects of dietary manganese proteinate or chromium picolinate supplementation. Journal Applied Poultry Research. 8: 280-287. 

Shim KS, Hwang KT, Son MW et Park GH 2006 Lipid metabolism and peroxidation in broiler chicks under chronic heat stress. Asian-Aust. J. Anim. Sci., 19 (8) : 1206-1211. https://pdfs.semanticscholar.org/c930/1bea454d57efcf67ccf1f416c7e911b178c6.pdf

Szabo A, Mezes M, Horn P, Suto Z, Bazar G et Romvari R 2005 Developmental dynamics of some blood biochemical parameters in the growing turkey (Meleagris gallopavo). Acta Veter Hungary, 53 (4): 397-409.

Večerek V, Straková E, Suchý P et Voslářová E 2002 Influence of high environmental temperature on production and haematological and biochemical indexes in broiler chickens. Czech J. Anim. Sci., 47 (5) : 176-182. http://citeseerx.ist.psu.edu/viewdoc/download?doi=10.1.1.489.9197&rep=rep1&type=pdf


Received 1 November 2019; Accepted 2 December 2019; Published 2 January 2020

Go to top